|
Die für den MCAD-Mangel verantwortlichen Genmutationen werden üblicherweise in zwei unterschiedlichen Notationen beschrieben: a) in Form
des erfolgten Basenaustausches an einer bestimmten Position des Gencodes (c.985A>G), im folgenden Basennotation genannt, oder b) in Form der
Bezeichnung des daraus entstehenden Proteins (K329E), im folgenden
Proteinnotation genannt.
Leider wird in den Laborberichten zur molekulargenetischen Untersuchung oft nur eine der beiden möglichen Bezeichnungen genannt. Dieser
Umstand erschwert oft die Suche nach weiteren Informationen zu den etwas
selteneren Mutationen, da in vielen Online-Berichten natürlich genau
die andere, und somit unbekannte Notation verwendet wird.
Die folgende Liste enthält eine Übersicht vieler bisher bekannter
MCAD-Mutationen in beiden üblichen Notationen, sowie die Angabe des
betroffenen Exons/Introns und eine (vorsichtige) Einschätzung, ob es
sich um eine milde (benigne=gutartige) Mutation handeln könnte (siehe
unter der Tabelle angegebene Quelle). Bei einigen in der letzten Spalte
mit "ja" bezeichneten Mutationen stammt diese Einschätzung aus den
Befunden, bzw. den gegenüber den Eltern gemachten Äusserungen der
jeweiligen Stoffwechselambulanzen, in denen die davon betroffenen Kinder
betreut werden. Da die Einschätzungen in dieser Tabelle lediglich auf eine einzelne Mutation bezogen werden, ein MCAD-Mangel aber immer Mutationen auf beiden Genkopien voraussetzt, ist die Aussage "ja" so zu interpretieren, dass zumindest das von dieser Mutation betroffene Allel ein Enzym mit einem so großen Restnutzen produziert, dass alleine dadurch die Verarbeitung der mittelkettigen Fettsäuren weitgehend problemlos erfolgt.
Mutationen ohne Eintragung in der letzten Spalte sind allerdings nicht
automatisch als schwer einzustufen, es wurden in den öffentlich zugänglichen Quellen lediglich bislang keine Einschätzungen
dazu gefunden.
Anmerkung: Bei der in der folgenden Tabelle angegebenen Einstufung der Mutationen auf ihren möglichen Beitrag zur Ausprägung eines milden oder schweren MCAD-Mangels, muss ein ohne entsprechende Recherchen nicht ersichtlicher Umstand berücksichtigt
werden: mit sehr wenigen Ausnahmen kommen fast alle diese zur Zeit rund 70 bekannten MCAD-Punktmutationen sehr selten vor, und diese
Einschätzungen beruhen daher fast immer auf Untersuchungen einzelner Fälle, auf die in den Arbeiten anderer Forschungsgruppen jedoch immer und immer wieder referenziert wird.
Auch wenn sich also im Internet z.B. zu den Mutationen G267R oder S245L
dutzende Berichte teils neueren Datums finden lassen, die bei
homozygotem Vorliegen dieser beiden Mutationen eine milde Ausprägung
nahelegen, handelt es sich bei den in allen diesen Berichten genannten
MCAD-Patienten immer um die selben beiden Kinder, deren biochemische Auswirkungen des MCAD-Mangels bereits im Jahr 2001 untersucht und beschrieben wurden.
Eine wirklich breitere Datenbasis existiert daher nur für die sehr häufig
auffindbaren Mutationen, zu denen vor allem die Punktmutationen c.985A>G (K329E) und
c.199T>C (Y67H) zählen.
Punktmutationen
Als "Punktmutationen" werden genetische Mutationen bezeichnet, bei
denen an einer Stelle des genetischen Codes eine
Veränderung in
Form eines einzelnen Basenaustauschs erfolgt ist (missense-Mutation),
die restliche Sequenz durch diese Mutation aber nicht verändert wurde. Im Gegensatz dazu
führen Insertions, Deletions und auch Stopmutationen zu einer
vollständigen Veränderung der ab der betreffenden Stelle folgenden
Basensequenz.
In der Gesamtheit aller Punktmutationen, Insertions, Deletions,
Splicing- und sonstigen Varianten, wurden bis heute etwa 340
verschiedene Mutationen des ACADM-Gens identifiziert. Etwa 89% aller
betroffenen Allele in der westlichen Welt weisen allerdings die
K329E-Mutation auf.
DNA-Basenwechsel
|
Exon/Intron |
Protein
|
trägt möglicheweise zu milder Ausprägung bei? |
c.50G>A
|
Exon 1 |
p.R17H
|
|
|
c.85C>T
|
Exon 2
|
p.R29X |
nein (Stop-Codon am Anfang der Sequenz)
|
| c.127G>A |
Exon 3 |
p.E43K |
ja |
| c.134A>G |
Exon 3
|
p.Q45R |
|
| c.145C>G |
Exon 3 |
p.Q49E |
(ja) nein |
| c.155C>T |
Exon 3
|
p.A52V |
|
| c.157C>T |
Exon 3
|
p.R53C |
|
| c.166G>C |
Exon 3
|
p.A56P |
|
| c.199T>C |
Exon 3 |
p.Y67H |
ja |
| c.233T>C |
Exon 4
|
p.I78T |
nein |
| c.250C>T |
Exon 4
|
p.L84F |
|
| c.253G>T |
Exon 4
|
p.G85C |
|
| c.275C>T |
Exon 4
|
p.P92L |
|
| c.311A>G |
Exon 5
|
p.D104G |
|
| c.320T>C |
Exon 5
|
p.L107S |
|
| c.347G>A |
Exon 5
|
p.C116Y |
|
| c.351A>C |
Exon 5
|
p.T117T |
ja |
| c.362C>T |
Exon 5
|
p.T121I |
|
| c.395C>G |
Exon 6
|
p.P132R |
|
| c.430A>T |
Exon 6 |
p.K144X |
nein (Stop-Codon nach erstem Drittel der Sequenz)
|
| c.443G>A |
Exon 6
|
p.R148K
|
|
| c.447G>A |
Exon 6
|
p.M149I |
|
| c.464T>C |
Exon 6
|
p.M155T |
nein |
| c.472T>C |
Exon 7
|
p.Y158H |
ja |
| c.474T>G |
Exon 7
|
p.Y158X |
? (Stop-Codon in der Mitte der Sequenz)
|
| c.499T>C |
Exon 7
|
p.S167P |
|
| c.526G>A |
Exon 7
|
p.A176T |
|
| c.577A>G |
Exon 7
|
p.T193A |
|
| c.580A>G |
Exon 7
|
p.N194D |
|
| c.583G>A |
Exon 7
|
p.G195R |
|
| c.589A>G |
Exon 7
|
p.K197E |
|
| c.608T>G |
Exon 8
|
p.L203X |
? (Stop-Codon in der Mitte der Sequenz)
|
| c.609A>C |
Exon 8
|
p.L203F |
|
| c.616C>T |
Exon 8
|
p.R206C |
|
| c.617G>A |
Exon 8
|
p.R206H |
ja |
| c.617G>T |
Exon 8
|
p.R206L |
|
| c.631C>T |
Exon 8
|
p.P211S |
|
c.661G>A
|
Exon 8
|
p.G221R
|
|
c.662G>A
|
Exon 8
|
p.G221E
|
|
| c.683C>A |
Exon 8
|
p.T228N |
|
c.698T>C
|
Exon 8
|
p.I233T
|
ja
|
| c.694C>T |
Exon 8
|
p.Q232X |
? (Stop-Codon in der Mitte der Sequenz)
|
| c.730T>C |
Exon 9
|
p.C244R |
|
| c.734C>T |
Exon 9
|
p.S245L |
ja |
| c.742A>G |
Exon 9
|
p.R248G |
|
| c.789A>C |
Exon 9
|
p.L263F |
|
| c.797A>G |
Exon 9 |
p.D266G |
ja |
| c.799G>A |
Exon 9 |
p.G267R |
homozyg.: ja
comp-het.: nein
|
c.806G>A
|
Exon 9
|
p.G269D
|
|
| c.820A>G |
Exon 9
|
p.M274V |
|
c.842G>C
|
Exon 9
|
p.R281T |
|
| c.843A>T |
Exon 9
|
p.R281S |
|
| c.881G>C |
Exon 10 |
p.R294T |
|
| c.890A>G |
Exon 10
|
p.D297G |
ja |
| c.928G>A |
Exon 10
|
p.G310R |
|
| c.977T>C |
Exon 11
|
p.M326T |
|
| c.985A>G |
Exon 11 |
p.K329E |
nein |
| c.1001G>A |
Exon 11
|
p.R334K |
|
| c.1008T>A |
Exon 11
|
p.S336R |
|
| c.1045C>T |
Exon 11
|
p.R349X |
? (Stop-Codon gegen Ende der Sequenz)
|
c.1052C>T
|
Exon 11
|
p.T351I
|
|
| c.1055A>G |
Exon 11
|
p.Y352C |
|
| c.1067T>C |
Exon 11
|
p.I356T |
|
| c.1085G>A |
Exon 11
|
p.G362E |
|
| c.1124T>C |
Exon 11
|
p.I375T |
|
| c.1150G>T |
Exon 11
|
p.E384X |
? (Stop-Codon gegen Ende der Sequenz)
|
| c.1189T>A |
Exon 11
|
p.Y397N |
|
| c.1237C>A |
Exon 12
|
p.R413S |
|
Tabelle 1: Übersicht der meisten bislang bekannten Punktmutationen
Tabelle 2: Weitere Mutationen aus den Reihen der Mitglieder dieser Seite
Zur Erklärung der in beiden Notationen verwendeten Zählweise
Die DNA-Strang setzt sich aus variabler Abfolge der Basen Adenin, Guanin, Cytosin und Thymin zusammen. Immer drei Basen bilden zusammen ein Codon (Basentriplett), welches für eine
bestimmte Aminosäure codiert. Bei der Zählung in der Proteinnotation wird immer
die Nummer des Basentripletts angegeben, daher ist die enthaltene
Zahl immer genau ein Drittel so groß, wie die in der Basennotation
genannte Position der veränderten Base. Die Basen an den Positionen 1, 2 und 3 gehören
somit zum ersten Triplett, die Positionen 4,5 und 6 zum zweiten, usw.
In der Proteinnotation wird zusätzlich angeführt, welche aus diesen drei
Basen codierte Aminosäure normalerweise entstehen sollte, und welche
aufgrund der vorliegenden Mutation nun stattdessen gebildet wird. Dies
wird mit den Buchstaben vor und nach der Zahl ausgedrückt. Da jeweils mehrere der 20 existierenden Aminosäuren mit dem gleichen
Buchstaben beginnen, werden sie in der Nomenklatur mit einbuchstabigen
Symbolen abgekürzt, die teilweise nichts mit dem realen Namen zu tun
haben (siehe Tabelle 3).
Beispiel: Die am weitesten verbreitete Mutation c.985A>G
beschreibt einen Austausch der 985. Base von Adenin (A) nach Guanin
(G), welche (geteilt durch 3) die erste der drei Basen des 329.
Tripletts ist. Dadurch entsteht aus der normalerweise mit diesem
Triplett codierten Aminosäure Lysin (Symbol "K", an dieser Position in der Codonvariante AAA enthalten) die Aminosäure Glutamat (Symbol "E", Codon GAA). Zusammengesetzt lässt sich somit aus 985A>G die andere Schreibweise
der gleichen Mutation namens K329E ableiten.
Name der Aminosäure
|
Symbol
|
mögliche Codons |
| Alanin |
A |
GCT, GCC, GCA, GCG |
| Arginin |
R |
CGT, CGC, CGA, CGG, AGA, AGG |
| Asparagin |
N |
AAT, AAC |
| Asparaginsäure |
D |
GAT, GAC
|
| Cystein |
C |
TGT, TGC |
| Glutamin |
Q |
CAA, CAG |
| Glutaminsäure (Glutamat) |
E |
GAA, GAG |
| Glycin |
G |
GGT, GGC, GGA, GGG |
| Histidin |
H |
CAT, CAC |
| Isoleucin |
I |
ATT, ATC, ATA |
| Leucin |
L |
TTA, TTG, CTT, CTC, CTA, CTG |
| Lysin |
K |
AAA, AAG |
| Methionin (Start-Codon) |
M |
ATG |
| Phenylalanin |
F |
TTT, TTC |
| Prolin |
P |
CGT, CCC, CCA, CCG |
| Serin |
S |
TCT, TCC, TCA, TCG, AGT, AGC |
| Threonin |
T |
ACT, ACC, ACA, ACG |
| Tryptophan |
W |
TGG |
| Tyrosin |
Y |
TAT, TAC |
| Valin |
V |
GTT, GTC, GTA, GTG
|
| Stop(Nonsense)-Codons |
X |
TAA, TAG, TGA |
Tabelle 3: Alle 20 Aminosäuren, deren Symbole und mögliche Codons
Um bei Interesse nun herauszufinden, was durch die gefundene Mutation
genau passiert, kann die obige Tabelle herangezogen werden.
Beispiel: Die häufig gefundene und als mild eingeschätzte
Mutation p.Y67H (c.199T>C) bewirkt den Wechsel von Tyrosin (Symbol "Y",
Codons TAT, TAC) nach Histidin (Symbol "H", Codons CAT, CAC) im 67.
Triplett, welches die Basen 199, 200 und 201 umfasst. Der Basenaustausch
erfolgt in der ersten Base dieses Tripletts, also änderte
sich gemäß Tabelle 5 das Codon an dieser Stelle von TAT nach CAT.
Eine Sonderform - die "stillen" Mutationen!
Nicht jede Mutation in Form eines Basenaustauschs führt zwangsläufig zur Bildung einer falschen Aminosäure innerhalb der Sequenz. Da sich aufgrund der Kombinationsmöglichkeiten aus den vier Basen A, C, G und T insgesamt 64 verschiedene Codons bilden lassen, die aber insgesamt nur für 20 (mit "X" 21) verschiedene Aminosäuren codieren, gibt es eine ganze Reihe von denkbaren und auch vorkommenden Mutationen, die zwar eine Base gegen eine andere austauschen, jedoch im Ergebnis trotzdem die gleiche Aminosäure produzieren. So kann z.B. das "T" in GCT auch aufgrund einer Mutation durch die Basen A, C und G ersetzt werden, und trotzdem führen alle diese Variationen nach wie vor zur Bildung von Alanin. Man bezeichnet diese Mutationen als "still", bzw "silent", da man sie zwar im Rahmen einer Gensequenzierung finden würde, die Aminosäurenfolge jedoch nicht verändert ist und das Protein somit keinerlei Auffälligkeiten bzw Einschränkungen aufweist.
Die vollständige MCAD-Aminosäuren-Sequenz
Insgesamt besteht das MCAD-Enzym aus einer Sequenz von 421 Aminosäuren und somit aus 1263
codierenden Basen. Die restlichen 37640 Basen befinden sich innerhalb
von Introns oder anderen nicht codierenden Regionen. Die normale Abfolge
der Aminosäuren-Sequenz lautet wie folgt:
|
1-10
|
11-20 |
21-30 |
31-40 |
41-50
|
1-50
|
MAAGFGRCCR |
VLRSISRFHW |
RSQHTKANRQ |
REPGLGFSFE |
FTEQQKEFQA |
51-100
|
TARKFAREEI |
IPVAAEYDKT |
GEYPVPLIRR |
AWELGLMNTH |
IPENCGGLGL |
101-150
|
GTFDACLISE |
ELAYGCTGVQ |
TAIEGNSLGQ |
MPIIIAGNDQ |
QKKKYLGRMT |
151-200
|
EEPLMCAYCV |
TEPGAGSDVA |
GIKTKAEKKG |
DEYIINGQKM |
WITNGGKANW |
201-250
|
YFLLARSDPD |
PKAPANKAFT |
GFIVEADTPG |
IQIGRKELNM |
GQRCSDTRGI |
251-300
|
VFEDVKVPKE |
NVLIGDGAGF |
KVAMGAFDKT |
RPVVAAGAVG |
LAQRALDEAT |
301-350
|
KYALERKTFG |
KLLVEHQAIS |
FMLAEMAMKV |
ELARMSYQRA |
AWEVDSGRRN |
351-400
|
TYYASIAKAF |
AGDIANQLAT |
DAVQILGGNG |
FNTEYPVEKL |
MRDAKIYQIY |
401-421
|
EGTSQIQRLI |
VAREHIDKYK |
N(X) |
|
|
Tabelle 4: Aminosäuren-Sequenz des MCAD-Enzyms mit markierten Mutationsvorkommen
Rot: in MCAD-Datenbank enthaltene Mutationen (1. Tabelle)
Blau: weitere bei Mitgliedern gefundene Mutationen (2. Tabelle)
Grau: Mutationen, die zu einem Stop-Codon führen (wenn Austausch nach X)
Schwarz: Die am weitesten verbreitete Mutation K329E (c.985A>G)
Grün: Die inzwischen oft gefundene milde Mutation Y67H(c.199T>C)
Die vollständige Nukleotid-Sequenz
Die zuvor aufgeführten Aminosäuren werden durch die oben beschriebenen
Basentripletts codiert. Die Sequenz beginnt mit dem Startcodon "atg" ,
welches gleichzeitig die Aminosäure Methionin (M) codiert. Es folgt in der ersten
Zeile mit den Codons "gca gcg ggg ttc ggg cga tgc tgc agg" die
Aminosäuren-Sequenz "A A G F G R C C R", usw. Die gesamte Folge endet
mit einem der drei möglichen Stopcodons, in diesem Fall "taa". Auch in
dieser Tabelle ist die für K329E (c.985a>g) verantwortliche Mutation
in schwarz und die für Y67H (c.199t>c) zuständige Mutation in grün
markiert, diesmal allerdings auf Basenebene.
An allen rot markierten Stellen kann sich ein vorzeitiges Stop-Codon (taa, tag, tga) ergeben, wenn durch eine vorher in der Sequenz auftretende Insertion oder Deletion eine Verschiebung des Leserasters um eine oder zwei Stellen nach vorne oder nach hinten bewirkt wird.
|
1
31
61
91
121
151
181
211
241
271
301
331
361
391
421
451
481
511
541
571
601
631
661
691
721
751
781
811
841
871
901
931
961
991
1021
1051
1081
1111
1141
1171
1201
1231
1261
|
atg gca gcg ggg ttc ggg cga tgc tgc agg
gtc ctg aga agt att tct cgt ttt cat tgg
aga tca cag cat aca aaa gcc aat cga caa
cgt gaa cca gga tta gga ttt agt ttt gag
ttc acc gaa cag cag aaa gaa ttt caa gct
act gct cgt aaa ttt gcc aga gag gaa atc
atc cca gtg gct gca gaa tat gat aaa act
ggt gaa tat cca gtc ccc cta att aga aga
gcc tgg gaa ctt ggt tta atg aac aca cac
att cca gag aac tgt gga ggt ctt gga ctt
gga act ttt gat gct tgt tta att agt gaa
gaa ttg gct tat gga tgt aca ggg gtt cag
act gct att gaa gga aat tct ttg ggg caa
atg cct att att att gct gga aat gat caa
caa aag aag aag tat ttg ggg aga atg act
gag gag cca ttg atg tgt gct tat tgt gta
aca gaa cct gga gca ggc tct gat gta gct
ggt ata aag acc aaa gca gaa aag aaa gga
gat gag tat att att aat ggt cag aag atg
tgg ata acc aac gga gga aaa gct aat tgg
tat ttt tta ttg gca cgt tct gat cca gat
cct aaa gct cct gct aat aaa gcc ttt act
gga ttc att gtg gaa gca gat acc cca gga
att cag att ggg aga aag gaa tta aac atg
ggc cag cga tgt tca gat act aga gga att
gtc ttc gaa gat gtg aaa gtg cct aaa gaa
aat gtt tta att ggt gac gga gct ggt ttc
aaa gtt gca atg gga gct ttt gat aaa acc
aga cct gta gta gct gct ggt gct gtt gga
tta gca caa aga gct ttg gat gaa gct acc
aag tat gcc ctg gaa agg aaa act ttc gga
aag cta ctt gta gag cac caa gca ata tca
ttt atg ctg gct gaa atg gca atg aaa gtt
gaa cta gct aga atg agt tac cag aga gca
gct tgg gag gtt gat tct ggt cgt cga aat
acc tat tat gct tct att gca aag gca ttt
gct gga gat att gca aat cag tta gct act
gat gct gtg cag ata ctt gga ggc aat gga
ttt aat aca gaa tat cct gta gaa aaa cta
atg agg gat gcc aaa atc tat cag att tat
gaa ggt act tca caa att caa aga ctt att
gta gcc cgt gaa cac att gac aag tac aaa
aat taa
|
Tabelle 5: Nukleotid-(Basen-)Sequenz des MCAD-Enzyms
Besonderheiten einzelner Mutationen
c.127G>A (p.E43K)
Die klinische Relevanz dieser Mutation hinsichtlich der Auslösung eines
als solchen zu bezeichnenden MCAD-Mangels ist zweifelhaft. Die bisher in
Studien untersuchten Patienten mit der Mutationskombination c.985A>G
und c.127G>A zeigten im Neugeborenenscreening durchweg nur sehr
gering erhöhte C8 und C8/C10-Werte. Auch bei weiterer Beobachtung dieser
Kinder konnten nicht die sonst für den MCAD-Mangel charakteristischen
Auffälligkeiten gefunden werden. Diese Mutation scheint daher so harmlos
zu sein, dass sich die leichten Erhöhungen im Screening im Wesentlichen
aus dem gleichzeitigen Vorliegen der bekannten K329E-Mutation ableiten
lassen, die dann aber als quasi heterozygot vorliegende ACADM-Mutation
nicht zu einem nennenswerten Defizit des MCAD-Enzyms führt. Rein formal
ein milder MCAD-Mangel, aber ganz dicht dran am reinen Carrier.
(Quellen: "Tandem Mass Spectrometric Analysis for Amino, Organic, and Fatty Acid Disorders..."
und "Spectrum of Medium-Chain Acyl-CoA Dehydrogenase Deficiency detected by Newborn Screening")
c.74C>G (p.T25R)
Diese Mutation wird bislang nicht in den MCAD-Mutations-Datenbanken geführt, und scheint somit extrem selten zu sein. Sie wurde bei einem Kind in Kombination mit K329E gefunden, dessen phänotypische Ausprägung aufgrund der zwei gefundenen Mutationen und der leicht erhöhten Werte nach ärztlicher Einschätzung als milder MCAD-Mangel eingestuft wurde. Die im Neugeborenenscreening und den weiteren Untersuchungen ermittelten Acylcarnitinwerte lagen allerdings durchweg so minimal über den zugrundegelegten Grenzwerten, wie es sonst nur bei lediglich anfangs auffälligen, jedoch reinen Carriern der Fall ist. Die Mutation c.74C>G scheint daher - obwohl sie noch ganz am Anfang der Basensequenz platziert ist - fast gar keine Auswirkungen auf die Leistungsfähigkeit des MCAD-Enzyms zu haben, so dass sich die leicht erhöhten Werte im Wesentlichen aus dem gleichzeitigen Vorliegen der K329E-Mutation ableiten lassen. Rein formal
ein milder MCAD-Mangel, aber ganz dicht dran am reinen Carrier.
c.145C>G (p.Q49E)
Diese extrem seltene Mutation wurde in Folge einer schweren Entgleisung
bei einem dreijährigen Mädchen in Kombination mit c.985A>G gefunden
und wissenschaftlich untersucht. Die Untersuchungen haben eine relativ
hohe Restaktivität des Enzyms bei gleichzeitiger geringer Konzentration
der organischen Säuren im Urin während der Entgleisung ergeben. Obwohl
die Mutationskombination c.145C>G/c.985A>G daher trotz bereits
dokumentierter Entgleisung im vermutlich einzigen bekannten Fall ihres
Vorliegens in den wissenschaftlichen Datenbanken als möglicherweise
milde Ausprägung eines MCAD-Mangels geführt wird, soll hier festgehalten
werden, dass sie nicht dazu geeignet ist, eine risikofreie Ausprägung
des MCAD-Mangels vermuten zu lassen.
(Quelle: "A novel mutation of the ACADM gene (c.145C>G)...")
c.799G>A (p.G267R)
Diese Mutation wurde in der Vergangenheit (ab 1991) in compound
heterozygoter Kombination schon mehrmals in Folge einer metabolischen
Entgleisung gefunden. Beim direkten Vergleich mit den Restaktivitäten
von K329E haben sich zwar ähnliche Werte gezeigt, jedoch scheinen
Personen mit G267R homozygot eine milde Ausprägung des MCAD-Mangels
aufzuweisen. Diese Annahme basiert aber anscheinend auf bisher lediglich
einem untersuchten Fall eines türkischen Kindes mit blutsverwandten
Eltern.
(Quelle: "Molecular and functional characterisation of mild MCAD deficiency")
c.734C>T (p.S245L)
Auch über diese Mutation wurde bisher hauptsächlich herausgefunden, dass
sie bei homozygotem Vorliegen (ein untersuchter Fall eines türkischen
Kindes mit blutsverwandten Eltern) zu einer milden, bzw milderen
Ausprägung des MCAD-Mangels zu führen scheint, wenn man die
biochemischen Werte mit denen von K329E homozygot vergleicht.
(Quelle: "Molecular and functional characterisation of mild MCAD deficiency")
c.216+1G>T
Die Angabe "+1" in dieser Mutationsbezeichnung gibt an, dass die erste
("+1") Base aus dem Intron betroffen ist, welches dem Exon mit der
letzten Base an Position 216 folgt. Dabei handelt es sich um Exon 3, daher könnte diese Mutation auch mit der Bezeichnung IVS3+1G>T beschrieben werden. Die zwischen den Exons liegenden
Introns werden normalerweise während des Splicing-Prozesses entfernt, so
dass auf den Introns liegende Mutationen üblicherweise keine Bedeutung
haben. Der Beginn eines Intron-Segments wird jedoch meist mit der
Sequenz GU codiert (das Ende mit AG), und durch den Austausch von G>T
in der Startsequenz GU wird diese zu TU, wodurch das Splicing an dieser
Stelle nicht ordnungsgemäß funktioniert. Das Intron wird nicht als
solches erkannt und entfernt, sondern führt zur weitgehenden Fehlbildung
des entstehenden Proteins.
c.233T>C
Diese extrem seltene Mutation wurde im Rahmen einer von 2003-2005 laufenden niederländischen Studie zum MCAD-Mangel bei einem Kind mit möglicherweise blutsverwandten Eltern in homozygotem Zustand gefunden. Aufgrund der in typischer Weise erhöhten Acylcarnitinwerte und der deutlich verminderten Enzymrestaktivität wurde diese Mutation in die Gruppe der normalen, also schweren MCAD-Ausprägungen eingeordnet.
(Quelle: siehe Artikelsammlung "Neugeborenenscreening auf MCAD in den Niederlanden")
c.287/2A>G (IVS4-2A>G)
Wie bei der zuvor beschriebenen Mutation, bezieht sich auch diese hier
nicht auf ein Exon, sondern auf ein Intron, diesmal jedoch in der Rückwärtsbetrachtung. Die Notation IVS4-2A>G
gibt an, dass am Ende des dem vierten Exon (IVS4) vorangehenden Introns die vorletzte Base (-2) einen Austausch von Adenin (A)
nach Guanin (G) erfahren hat. Die zwischen den Exons liegenden Introns
werden normalerweise während des Splicing-Prozesses entfernt, so dass
auf den Introns liegende Mutationen üblicherweise keine Bedeutung
haben. Das Ende eines Intron-Segments wird jedoch meist mit der Sequenz
AG codiert (der Anfang mit GU), und durch den Austausch von A>G in
der Endsequenz AG wird diese zu GG, wodurch das Splicing an dieser
Stelle nicht ordnungsgemäß funktioniert. Das Intron wird nicht als
solches erkannt und entfernt, sondern führt zur weitgehenden Fehlbildung
des entstehenden Proteins.
c.203delA (ASP43ValfsX10)
Durch die Deletion, also Löschung eines Zeichens an Basenposition 203 verschiebt sich bei
dieser Mutation das Leseraster der Aminosäuren-Codierungs-Sequenz um
eine Stelle. Dies wird auch durch die Buchstabenfolge fs (=Frameshift) in der Proteinnotation ausgedrückt. Dies führt in der Folge schon wenige Tripletts später (Position 229) zur vorzeitigen Entstehung eines
Stop-Codons, an dem die Bildung der Proteins abgebrochen wird. Unter
"Leseraster" ist zu verstehen, dass immer 3 Basen zusammen ein
Basentriplett (Codon) bilden, aus dem eine der 20 möglichen,
unterschiedlichen Aminosäuren produziert wird. Wenn, wie im Fall dieser
Mutation, eine einzelne Base gelöscht wurde, rutscht im
Dreier-Leseraster für das betroffene und alle folgenden Codons die erste
Base aus dem eigentlich erst nächsten Codon nach. Somit werden ab
dieser Position alle Aminosäuren falsch codiert, und das entstehende
Protein - und somit das MCAD-Enzym - ist weitgehend funktionslos. An vielen Stellen in der Basenabfolge entsteht durch die Verschiebung des Leserasters eines der drei möglichen Stop-Codons taa, tga oder tag, so dass eine frühe in der Basenfolge auftretende Deletion oder Insertion in den meisten Fällen zu einem verfrühten vollständigen Abbruch der Proteinbauphase führt.
c.927delC
Durch die Deletion eines Zeichens an Position 927 verschiebt sich bei
dieser Mutation das Leseraster der Aminosäuren-Codierungs-Sequenz um
eine Stelle (siehe c.203delA, so dass wenige Stellen (Position 940) nach dieser Mutation ein vorzeitiges Stop-Codon entsteht.
c.1114_1115insG
Diese Mutation führte zur Insertion einer zusätzlichen Guanin-Base
zwischen den Basenpositionen 1114 und 1115, wodurch sich, wie zuvor
beschrieben, eine Verschiebung des Leserasters um eine Stelle ergibt (siehe c.203delA) und an Position 1144 ein vorzeitiges Stop-Codon entsteht.
Die Position 1114 befindet sich allerdings schon sehr weit am Ende des
Gencodes, wodurch ein sehr großer Teil davor noch korrekt gebildet werden
sollte. Je weiter hinten im Code ein Fehler auftritt, desto mehr
Restaktivität hat üblicherweise der bis dahin gebildete Enzymabschnitt.
c.901a>t
Diese Mutation wurde anscheinend bislang erst einmal gefunden. Durch den Wechsel von Adenin nach Thymin an Basenposition 901 wird aus dem dort normalerweise stehenden Lysin-Codon (aag) ein verfrühtes Stop-Codon (tag), welches die Proteinbildung beendet. Das letzte Drittel der Codierungssequenz wird damit nutzlos, jedoch könnte das bis dahin ordnungsgemäß gebaute Protein noch einen relativ großen Restnutzen haben. Die Acylcarnitinwerte des Carrier-Elternteils lassen zumindest darauf schliessen.
c.244_245insT
Diese Mutation führte zur Insertion einer zusätzlichen Thymin-Base
zwischen den Basenpositionen 244 und 245, wodurch sich eine Verschiebung des Leserasters um eine Stelle ergibt (siehe c.203delA) und an Position 310 ein vorzeitiges Stop-Codon entsteht.
Die Position 310 befindet sich am Ende des ersten Viertels des
Gencodes, wodurch ein extrem verkürztes Protein mit rund einem Viertel falsch codierter Aminosäuren gebildet wird. Dadurch steht fest, dass es sich hierbei um eine Mutation mit sehr schweren Auswirkungen handelt. Der hiervon gebildete Teil der "MCAD-Enzyme" ist zu nichts zu gebrauchen.
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